Penetapan Kadar Katekin dan Uji Aktivitas Antioksidan Dari Seduhan dan Ekstrak Etanol Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Secara Spektrofotometri Uv-Vis
Bilah Samping Artikel
Isi Artikel Utama
Page: 2349-2361
Abstrak
Pendahuluan: Biji kakao (Theobroma cacao L.) dikenal sebagai sumber senyawa bioaktif polifenol yang kaya, khususnya flavan-3-ol seperti katekin dan epikatekin, yang memiliki aktivitas antioksidan potensial. Metabolit sekunder ini berperan penting dalam menetralkan radikal bebas, sehingga mengurangi stres oksidatif yang terkait dengan berbagai penyakit degeneratif.. Tujuan: Penelitian ini bertujuan membandingkan kadar setara katekin dan aktivitas peredaman radikal DPPH antara ekstrak etanol (maserasi dengan etanol 70%) dan infusa akuades (90°C, 15 menit) biji kakao. Metode: Skrining fitokimia dilakukan secara kualitatif. Kadar setara katekin ditentukan menggunakan spektrofotometri UV-Vis pada 280 nm, sedangkan aktivitas antioksidan diuji dengan metode DPPH pada 515 nm menggunakan vitamin C sebagai kontrol positif. Hasil: Kedua sampel mengandung alkaloid, flavonoid, saponin, tanin, triterpenoid/steroid, polifenol, dan glikosida. Ekstrak etanol menunjukkan kadar setara katekin lebih tinggi (37,15 ± 0,07 µg/mL) dibandingkan infusa (19,83 ± 0,10 µg/mL), setara dengan 12,53 ± 0,72 mg/g dan 11,18 ± 1,72 mg/g. Uji DPPH menunjukkan aktivitas antioksidan ekstrak etanol (IC₅₀ = 83,29 µg/mL; kategori kuat) superior dibandingkan infusa (IC₅₀ = 192,65 µg/mL; kategori lemah), dengan vitamin C menunjukkan IC₅₀ = 2,95 µg/mL (sangat kuat). Kesimpulan: Maserasi etanol lebih efektif daripada infusa akuades untuk mengekstraksi setara katekin dan menghasilkan aktivitas antioksidan yang lebih tinggi dari biji kakao. Konfirmasi lebih lanjut menggunakan HPLC-DAD atau LC-MS direkomendasikan untuk memvalidasi konsentrasi katekin spesifik.
Unduhan
Rincian Artikel
Artikel ini berlisensiCreative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International License.
Referensi
Ifmalinda I, Saputra E, Cherie D. Pengaruh suhu pengeringan terhadap mutu kakao (Theobroma cacao L.) varietas klon BL 50 pasca fermentasi. Teknotan J Ind Teknol Pertan 2023;17:105–14.
Krisyanti A, Goo EEK, Botu PSLS, Damayanti MFD, Rosadalima M, Anjelo M. Analisis Strategi Pengembangan Industri Coklat Lokal COSIK Berbasis Kakao Kabupaten Sikka. J Pelayanan Masy 2025;2:301–11.
Muhtar NI. Review Artikel: Pemanfaatan Senyawa Katekin sebagai Bahan Baku Sediaan Farmasi. J Teknol Dan Sains Mod 2026;3:29–36.
Fadhilah ZH, Perdana F, Syamsudin RAMR. Telaah kandungan senyawa katekin dan Epigalokatekin Galat (EGCG) sebagai antioksidan pada berbagai jenis teh. J Pharmascience 2021;8:31–44.
Utami RR. Antioksidan biji kakao: Pengaruh fermentasi dan penyangraian terhadap perubahannya (ulasan). J Ind Has Perkeb 2018;13:75–85.
Niswah FS, Yasa IWS, Nofrida R. Pengaruh suhu dan lama penyangraian biji kakao terhadap karakteristik mutu teh kulit biji kakao (Theobroma cacao L.). J Edukasi Pangan 2025;3:58–71.
Wicaksana AP. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Metanol Keping Biji Coklat (Theobroma cacao L.) Dengan Metode DPPH (1, 1-Diphenyl-2-Picryl Hidrazil) 2022.
Othman A, Jalil AMM, Weng KK, Ismail A, Abd Ghani N, Adenan I. Epicatechin content and antioxidant capacity of cocoa beans from four different countries. African J Biotechnol 2010;9:1052. https://doi.org/10.5897/AJB09.1219.
Emelda A. Polyphenol total content, IC50 and antioxidant activities of ethanol extract from some cocoa (Theobroma cacao) beans in South Sulawesi Indonesia. J Chem Pharm Res 2015;7:1211–4.
Sutjiati R, Devi LS, Prijatmoko D, Joealijanto R, Sulistyani E, Safitri BP, et al. Bioactive potential of edel cocoa bean (Theobroma cacao L) from Kedaton Jember: Cytotoxicity and antioxidants evaluation. J Dentomaxillofacial Sci 2022;7. https://doi.org/10.15562/jdmfs.v7i1.1068.
Indiarto R, Pranoto Y, Santoso U. In vitro Antioxidant Activity and Profile of Polyphenol Compounds Extracts and their Fractions on Cacao Beans. Pak J Biol Sci 2019;22:34–44.
Harahap SN, Situmorang N. Skrining fitokimia dari senyawa metabolit sekunder buah jambu biji merah (Psidium guajava l.). EduMatSains J Pendidikan, Mat Dan Sains 2021;5:153–64.
Butar-Butar RGS, Neswita E, Sembiring NB, Novriani E, Simanjuntak NJP, Pakpahan EH. Uji skrining fitokimia dan pengukuran kadar total flavonoid pada ekstrak paku (Nephrolepis biserrata) dengan fraksi n-heksana, etil asetat, dan air. J Pharm Sci 2023:1142–60.
Natasya E, Daulay AS, Ridwanto R, Rahayu YP. Determination of total flavonoid content of wood extract raru (Cotylelobium lanceolatum Craib ) based on differences in ethanol concentration with Uv-Vis spectrophotometry methods. J Pharm Sci 2023;6:1804–1810. https://doi.org/https://doi.org/10.36490/journal-jps.com.v6i4.305.
Ruso S, Pirman P. the Processing and Analysis of the Polyphenols Content of Cocoa Bean (Theobroma Cocoa L) and the Development As Functional Foods. Semin. Nas. Has. Penelit. Pengabdi. Kpd. Masy., vol. 3, 2018.
Syiaulhaq S. Uji Aktivitas Ekstrak Etanol Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Asal Kabupaten Bulukumba Terhadap Penurunan Kadar Gula Darah Tikus (Rattus norvegicus): Kata Kunci: Biji Kakao (Theobroma cacao L.); Gula darah; Tikus putih (Rattus norvegicus); Glukometer. J Novem Med Farm 2023;2:1–10.
Ridwanto R, Rosa VD, Rani Z, Fauzi ZPA. Utilization of chitosan from fresh water lobster (cherax quadricarinatus) shells in anti-acne gel preparations. Trends Sci 2024;21:7243.
Handayani S, Najib, A., Wisdawati, W., & Khoiriyah A. Aktivitas Antioksidan Caulerpa lentillifera J. Agardh Dengan Metode Peredaman Radikal Bebas 1, 1-diphenyl-2 picrylhydrazil. J Kesehat 2020;13:61–70.
Ri D. Materia Medika Indonesia. Jakarta: Dapartemen Kesehatan Ri.; 1995.
Pom D. Materia Medika Indonesia Jilid V. . Departemen Kesehatan Republik Indonesia, Vii; 1985.
Azah NI, Muchtarichie R, Iskandar Y. Standardization Parameters For Cocoa Pods (Theobroma cacao L.). J Ilm Farm 2020;16:182–195. https://doi.org/Https://Doi.Org/10.20885/Jif.Vol16.Iss2.
Arsyad R, Amin A, Waris R. Teknik Pembuatan Dan Nilai Rendamen Simplisia Dan Ekstrak Etanol Biji Bagore (Caesalpinia Crista L.) Asal Polewali Mandar. Makassar Nat Prod J 2023;1:2023–2138.
Daulay, S A. Karakterisasi Dan Uji Intensitas Warna Kuning Pada Ekstrak Campuran Kunyit-Daun Salam Yang Berpotensi Sebagai Pewarna Pangan Universal. 2014:4171–3.
Molyneux P. The use of the stable free radical diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) for estimating antioxidant activity. Songklanakarin J Sci Technol 2004;26:211–9.
Devitria R. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Metanol Daun Ciplukan menggunakan Metode 2, 2-Diphenyl 1-Picrylhydrazyl (DPPH). J Penelit Farm Indones 2020;9:31–6.
Dewi. Optimasi Perbandingan Pelarut Etanol Air Terhadap Kadar Tanin Pada Daun Matoa (Pometia Pinnata J.R & G. Forst) Secara Spektrofotometri. Chim Nat Acta 2021;9:102–106. https://doi.org/Https://Doi.Org/10.24198/Cna.V9.N3.36768.
Fitriana YAN, Fitri AS. Analisis kadar vitamin c pada buah jeruk menggunakan metode titrasi iodometri. Sainteks 2020;17:27-32.
HM N, R Y, Z R, A N. Phytochemical screening and antibacterial activity test of ethanol extract of jengkol leaves (Archidendron pauciflorum Benth.) IC Nielsen against Staphylococcus epidermidis and Propionibacterium acnes. Int J Sci Technol Manag 2020.
Fitria Novika Sari YS. Uji Aktivitas Antioksidan Pada Limbah Kulit Buah-Buahan Khas Indonesia. J Anal Farm 2023;8:123–131.
Hii CL, Law CL, Cloke M, Suzannah S. Thin layer drying kinetics of cocoa and dried product quality. Biosystems Engineering. 2009;102(2):153–161. https://doi.org/10.1016/j.biosystemseng.2008.10.007.
Żyżelewicz D, Krysiak W, Nebesny E, Budryn G. Application of various methods for determination of the color of cocoa beans roasted under variable process parameters. European Food Research and Technology. 2014;238:549–563. https://doi.org/10.1007/s00217-013-2123-6.
Martini MH, Figueira A, Lenci CG, Tavares DQ. Polyphenolic cells and their interrelation with cotyledon cells in seven species of Theobroma (Sterculiaceae). Brazilian Journal of Botany. 2008;31(3):425–431. https://doi.org/10.1590/S0100-84042008000300006.
Cerri M, Reale L, Zadra C. Metabolite storage in Theobroma cacao L. seed: cyto-histological and phytochemical analyses. Frontiers in Plant Science. 2019;10:1599. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.01599.
Gottumukkala RVSS, Nadimpalli N, Sukala K, Subbaraju GV. Determination of catechin and epicatechin content in chocolates by high-performance liquid chromatography. International Scholarly Research Notices. 2014;2014:628196. https://doi.org/10.1155/2014/628196.
Othman A, Ismail A, Ghani NA, Adenan I. Antioxidant capacity and phenolic content of cocoa beans. Food Chemistry. 2007;100(4):1523–1530. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.12.021.
Payne MJ, Hurst WJ, Miller KB, Rank C, Stuart DA. Impact of fermentation, drying, roasting, and Dutch processing on epicatechin and catechin content of cacao beans and cocoa ingredients. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 2010;58(19):10518–10527. https://doi.org/10.1021/jf102391q.
Toro-Uribe S, Herrero M, Decker EA, López-Giraldo LJ, Ibáñez E. Preparative separation of procyanidins from cocoa polyphenolic extract: comparative study of different fractionation techniques. Molecules. 2020;25(12):2842. https://doi.org/10.3390/molecules25122842.